Preview

Акушерство и Гинекология Санкт-Петербурга

Расширенный поиск

Метаболомика как инструмент поиска потенциальных биомаркеров гинекологических заболеваний

Полный текст:

Аннотация

В современной медицинской науке все большее значение приобретает использование омик-технологий: геномики, транскрипто-мики, протеомики и метаболомики. Метаболомика наиболее точно отражает мельчайшие изменения в функционировании организма, поскольку занимается изучением метаболома - комплекса промежуточных и конечных продуктов обмена. Поэтому метаболомику активно используют в фундаментальных и клинических исследованиях, в том числе для поиска потенциальных биомаркеров заболеваний. Перспективный биомаркер может быть использован в ходе диагностики заболевания, отслеживания реакции на проводимую терапию, стратификации пациентов и прогнозирования исходов. Гинекология в этом смысле не является исключением, поскольку для целого ряда гинекологических заболеваний до сих пор не найдены эффективные биомаркеры. В настоящем обзоре мы просуммировали результаты доступных исследований, посвященных поиску потенциальных биомаркеров с помощью методов метаболомики.

Об авторах

И. Е. Говоров
ФГБУ Национальный Медицинский Исследовательский Центр им. В.А. Алмазова
Россия

Говоров Игорь Евгеньевич - младший научный сотрудник Н ИЛ оперативной гинекологии.

Ул. Аккуратова, д. 2, Санкт-Петербург, 197341



Е. А. Калинина
ФГБУ Национальный Медицинский Исследовательский Центр им. В.А. Алмазова
Россия

Калинина Евгения Александровна, врач акушер-гинеколог отделения гинекологии.

Ул. Аккуратова, д. 2, Санкт-Петербург, 197341



С. И. Ситкин
Северо-Западный государственный медицинский университет им. И.И. Мечникова
Россия

Ситкин Станислав Игоревич, кандидат медицинских наук, врач-гастроэнтеролог, доцент кафедры пропедевтики внутренних болезней.

Пискаревский проспект, д. 47, Санкт-Петербург, 195067



А. В. Малушко
ФГБУ Национальный Медицинский Исследовательский Центр им. В.А. Алмазова
Россия

Малушко Антон Викторович, врач акушер-гинеколог отделения гинекологии.

Ул. Аккуратова, д. 2, Санкт-Петербург, 197341



Т. М. Первунина
ФГБУ Национальный Медицинский Исследовательский Центр им. В.А. Алмазова
Россия

Первунина Татьяна Михайловна - кандидат медицинских наук, директор Института перинатологии и педиатрии НМИЦ им. В.А. Алмазова; доцент кафедры педиатрии СПбГУ.

Ул. Аккуратова, д. 2, Санкт-Петербург, 197341; Университетская наб., д. 7-9, Санкт-Петербург, 199034


Т. С. Шевелева
ФГБУ Национальный Медицинский Исследовательский Центр им. В.А. Алмазова
Россия

Шевелева Татьяна Сергеевна - младший научный сотрудник НИЛ оперативной гинекологии

Ул. Аккуратова, д. 2, Санкт-Петербург, 197341



А. В. Иванов
Клиника высоких медицинских технологий им. Н.И. Пирогова, Санкт-Петербургский государственный университет
Россия

Иванов Андрей Владимирович - кандидат биологических наук, биолог отделения гематологии.

Набережная реки Фонтанки, д. 154, Санкт-Петербург, 190103



Э. Э. Комличенко
Первый Санкт-Петербургский государственный медицинский университет имени академика И.П. Павлова
Россия

Комличенко Эдуард Эдуардович – студент.

Ул. Льва Толстого, д. 6-8, Санкт-Петербург, 197022



Э. Д. Желонкина
Первый Санкт-Петербургский государственный медицинский университет имени академика И.П. Павлова
Россия

Желонкина Эвелина Дмитриевна – студент.

Ул. Льва Толстого, д. 6-8, Санкт-Петербург, 197022



Э. В. Комличенко
ФГБУ Национальный Медицинский Исследовательский Центр им. В.А. Алмазова
Россия

Комличенко Эдуард Владимирович - доктор медицинских наук, профессор, доцент кафедры акушерства и гинекологии; директор клиники перинатологии и педиатрии, заведующий лабораторией оперативной гинекологии НМИЦ.

Университетская наб., д. 7-9, Санкт-Петербург, 199034, Россия; ул. Аккуратова, д. 2, Санкт-Петербург, 197341



Список литературы

1. Denny L., Prendiville W. Cancer of the cervix: Early detection and cost-effective solutions. Int J Gynaecol Obstet. 2015; 131 Suppl 1: 28-32. doi: 10.1016/j.ijgo.2015.02.009.

2. Arbyn M., Anttila A., Jordan J., Ronco G., Schenck U., Segnan N. et al. European Guidelines for Quality Assurance in Cervical Cancer Screening. Second edition-summary document. Ann Oncol. 2010; 21 (3): 448-458. doi: 10.1093/an-nonc/mdp471.

3. Yin M.Z., Tan S., LiX., Hou Y., Cao G., Li K. et al. Identification of phosphatidylcholine and lysophosphatidylcholine as novel biomarkers for cervical cancers in a prospective cohort study. Tumour Biol. 2016; 37 (4): 5485-5492. doi: 10.1007/s13277-015-4164-x.

4. Yang K., Xia B., Wang W., Cheng J., Yin M., Xie H. et al. A Comprehensive Analysis of Metabolomics and Transcriptomics in Cervical Cancer. Sci Rep. 2017; 7: 43353. doi: 10.1038/srep43353.

5. YeN.,LiuC.,ShiP. Metabolomics analysis of cervical cancer, cervical intraepithelial neoplasia and chronic cervicitis by H-1 NMR spectroscopy. European Journal of Gynaecological Oncology. 2015; 36 (2): 174-180.

6. HasimA.,AliM., Mamtimin B., Ma J.Q., Li Q.Z.,AbudulaA. Metabonomic signature analysis of cervical carcinoma and precancerous lesions in women by (1)H NMR spectroscopy. Exp Ther Med. 2012; 3 (6): 945-951. doi: 10.3892/etm.2012.509.

7. Hasim A., Aili A., Maimaiti A., Mamtimin B., Abudula A., Upur H. Plasma-free amino acid profiling of cervical cancer and cervical intraepithelial neoplasia patients and its application for early detection. Mol Biol Rep. 2013; 40 (10): 5853-5859. doi: 10.1007/s11033-013-2691-3.

8. Munoz N., Hernandez-Suarez G., Mendez F., Molano M., Posso H., Moreno V. et al. Persistence of HPV infection and risk of high-grade cervical intraepithelial neoplasia in a cohort of Colombian women. Br J Cancer. 2009; 100 (7): 11841190. doi: 10.1038/sj.bjc.6604972.

9. Walker H., BurrellM., Flatley J., Powers H. A metabolite profiling method for diagnosis of precancerous cervical lesions and HPV persistence. Bioanalysis. 2017; 9 (8): 601-608. doi: 10.4155/bio-2017-0012.

10. Hou Y., Yin M., Sun F., Zhang T., Zhou X., Li H. et al. A metabolomics approach for predicting the response to neoadjuvant chemotherapy in cervical cancer patients. Mol Biosyst. 2014; 10 (8): 2126-2133. doi: 10.1039/c4mb00054d.

11. Chai Y., Wang J., Wang T., Yang Y., Su J., Shi F. et al. Application of 1H NMR spectroscopy-based metabonomics to feces of cervical cancer patients with radiation-induced acute intestinal symptoms. Radiother Oncol. 2015; 117 (2): 294-301. doi: 10.1016/j.radonc.2015.07.037.

12. Liang Q., Yu Q., Wu H.,Zhu Y.-z,Zhang A.-h. Metabolite fingerprint analysis of cervical cancer using LC-QTOF/MS and multivariate data analysis. Anal Methods. 2014; 6 (12): 3937-3942. doi: 10.1039/c4ay00399c.

13. Hu Y., Qi Y., Liu H., Fan G., Chai Y. Effects of celastrol on human cervical cancer cells as revealed by ion-trap gas chromatography-mass spectrometry based metabolic profiling. Biochim Biophys Acta. 2013; 1830 (3): 2779-2789. doi: 10.1016/j.bbagen.2012.10.024.

14. Selen E.S., Bolandnazar Z., Tonelli M., Butz D.E., Haviland J.A., Porter W.P. et al. NMR Metabolomics Show Evidence for Mitochondrial Oxidative Stress in a Mouse Model of Polycystic Ovary Syndrome. J Proteome Res. 2015; 14 (8): 3284-3291.

15. Revelli A., Delle Piane L., Casano S., Molinari E., Massobrio M., Rinaudo P Follicular fluid content and oocyte quality: from single biochemical markers to metabolomics. Reprod Biol Endocrinol. 2009; 7 (1): 40. doi: 10.1186/1477-7827-7-40.

16. Arya B.K., Haq A.U., Chaudhury K. Oocyte quality reflected by follicular fluid analysis in poly cystic ovary syndrome (PCOS): a hypothesis based on intermediates of energy metabolism. Med Hypotheses. 2012; 78 (4): 475-478.

17. Galazis N., Iacovou C., Haoula Z., Atiomo W. Metabolomic biomarkers of impaired glucose tolerance and type 2 diabetes mellitus with a potential for risk stratification in women with polycystic ovary syndrome. Eur J Obstet Gynecol Reprod Biol. 2012; 160 (2): 121-130. doi: 10.1016/j.ejogrb.2011.11.005.

18. Zhao Y., Fu L., Li R., Wang L.N., Yang Y., Liu N.N. et al. Metabolic profiles characterizing different phenotypes of polycystic ovary syndrome: plasma metabolomics analysis. BMC Med. 2012; 10: 153. doi: 10.1186/1741-7015-10-153.

19. Ma X., Fan L., Meng Y., Hou Z., Mao Y.D., Wang W. et al. Proteomic analysis of human ovaries from normal and polycystic ovarian syndrome. Mol Hum Reprod. 2007; 13 (8): 527-535. doi: 10.1093/molehr/gam036.

20. Sun L., Hu W., Liu Q., Hao Q., Sun B.,Zhang Q. et al. Metabonomics reveals plasma metabolic changes and inflammatory marker in polycystic ovary syndrome patients. J Proteome Res. 2012; 11 (5): 2937-2946. doi: 10.1021/pr3000317.

21. Atiomo W., Daykin C.A. Metabolomic biomarkers in women with polycystic ovary syndrome: a pilot study. Mol Hum Reprod. 2012; 18 (11): 546-553.

22. Zhao X., Xu F., Qi B., Hao S., Li Y., Li Y. et al. Serum metabolomics study of polycystic ovary syndrome based on liquid chromatography-mass spectrometry. J Proteome Res. 2014; 13 (2): 1101-1111. doi: 10.1021/pr401130w.

23. Dong F., Deng D., Chen H., Cheng W., Li Q., Luo R. et al. Serum metabolomics study of polycystic ovary syndrome based on UPLC-QTOF-MS coupled with a pattern recognition approach. Anal Bioanal Chem. 2015; 407 (16): 46834695. doi: 10.1007/s00216-015-8670-x.

24. Wang W., Wang S., Tan S., Wen M., Qian Y.,ZengX. etal. Detection of urine metabolites in polycystic ovary syndrome by UPLC triple-TOF-MS. Clin Chim Acta. 2015; 448: 39-47. doi: 10.1016/j.cca.2015.06.008.

25. Chen Y.X., ZhangX.J., Huang J., Zhou S.J., Liu F., Jiang L.L. et al. UHPLC/Q-TOFMS-based plasma metabolomics of polycystic ovary syndrome patients with and without insulin resistance. J Pharm Biomed Anal. 2016; 121: 141-150. doi: 10.1016/j.jpba.2016.01.025.

26. RoyChoudhury S., Mishra B.P., Khan T., Chattopadhayay R., Lodh I., Datta Ray C. et al. Serum metabolomics of Indian women with polycystic ovary syndrome using (1)H NMR coupled with a pattern recognition approach. Mol Biosyst. 2016; 12 (11): 3407- 3416. doi: 10.1039/c6mb00420b.

27. Chang A.Y., Lalia A.Z., Jenkins G.D., Dutta T., Carter R.E., Singh R.J. et al. Combining a nontargeted and targeted metabolomics approach to identify metabolic pathways significantly altered in polycystic ovary syndrome. Metabolism. 2017; 71: 52-63. doi: 10.1016/j.metabol.2017.03.002.

28. Malgorzata S., Marta Z.C., Arleta D., Dominika M., Andrzej S., Ewa S. Metabolic pathways of oleic and palmitic acid are intensified in PCOS patients with normal androgen levels. Prostaglandins Leukot Essent Fatty Acids. 2017; 126: 105-111. doi: 10.1016/j.plefa.2017.09.001.

29. RoyChoudhury S., More T.H., Chattopadhyay R., Lodh I., Ray C.D., Bose G. et al. Polycystic ovary syndrome in Indian women: a mass spectrometry based serum metabolomics approach. Metabolomics. 2017; 13 (10). doi: 10.1007/s11306-017-1253-4.

30. MurriM., InsenserM., Escobar-Morreale H.F. Metabolomics in polycystic ovary syndrome. Clin Chim Acta. 2014; 429: 181-188. doi: 10.1016/j.cca.2013.12.018.

31. Insenser M., Montes-Nieto R., Murri M., Escobar-Morreale H.F. Proteomic and metabolomic approaches to the study of polycystic ovary syndrome. Mol Cell Endocrinol. 2013; 370 (1-2): 65-77. doi: 10.1016/j.mce.2013.02.009.

32. Laughlin S.K., Schroeder J.C., Baird D.D. editors. New directions in the epidemiology of uterine fibroids. Seminars in reproductive medicine; 2010. Published in 2010 by Thieme Medical Publishers.

33. Marino J.L., Eskenazi B., Warner M., Samuels S., Vercellini P., Gavoni N. et al. Uterine leiomyoma and menstrual cycle characteristics in a population-based cohort study. Hum Reprod. 2004; 19 (10): 2350-2355. doi: 10.1093/humrep/deh407.

34. Kolankaya A., Arici A. Myomas and assisted reproductive technologies: when and how to act? Obstetrics and gynecology clinics of North America. 2006; 33 (1): 145-152.

35. Soares S.R., Barbosa dos Reis M.M., Camargos A.F. Diagnostic accuracy of so-nohysterography, transvaginal sonography, and hysterosalpingography in patients with uterine cavity diseases. Fertil Steril. 2000; 73 (2): 406-411.

36. Becker E. Jr., Lev-Toaff A.S., Kaufman E.P., Halpern E.J., Edelweiss M.I., Kurtz A.B. The added value of transvaginal sonohysterography over transvaginal sonography alone in women with known or suspected leiomyoma. J Ultrasound Med. 2002; 21 (3): 237-247.

37. Cicinelli E., Romano F., Anastasio P.S., Blasi N., Parisi C., Galantino P. Transabdominal sonohysterography, transvaginal sonography, and hysteroscopy in the evaluation of submucous myomas. Obstet Gynecol. 1995; 85 (1): 42-47.

38. Dueholm M., Lundorf E., Hansen E.S., Ledertoug S., Olesen F. Evaluation of the uterine cavity with magnetic resonance imaging, transvaginal sonography, hysterosonographic examination, and diagnostic hysteroscopy. Fertil Steril. 2001; 76 (2): 350-357.

39. Baban R.S. Serum protein and prolactin as diagnostic markers. Saudi Medical Journal. 2009; 30 (11): 1411 -1415.

40. Chen D.C., Liu J.Y., Wu G.J., Ku C.H., Su H.Y., Chen C.H. Serum vascular endothelial growth factor165 levels and uterine fibroid volume. Acta Obstet Gynecol Scand. 2005; 84 (4): 317-321. doi: 10.1111/j.0001-6349.2005.00621.x.

41. Basta P., Mach P., Pitynski K., Bednarek W., Klimek M., Zietek J. et al. Differences in the blood serum levels of soluble HLA-G concentrations between the menstrual cycle phases and menopause in patients with ovarian endometriosis and uterine leiomyoma. Neuroendocrinology Letters. 2009; 30 (1): 91-98.

42. Koukourakis M.I., Kontomanolis E., Giatromanolaki A., Sivridis E., Liberis V. Serum and tissue LDH levels in patients with breast/gynaecological cancer and benign diseases. Gynecol Obstet Invest. 2009; 67 (3): 162-168. doi: 10.1159/000183250.

43. MarkowskaA.,ZiolkowskaA., Nowinka K., MalendowiczL.K. Elevated blood active ghrelin and normal total ghrelin and obestatin concentrations in uterine leiomyoma. Eur J Gynaecol Oncol. 2009; 30 (3): 281-284.

44. Halila H., Suikkari A.M., Seppala M. The effect of hysterectomy on serum CA 125 levels in patients with adenomyosis and uterine fibroids. Hum Reprod. 1987; 2 (3): 265-256.

45. Myers E.R., Barber M.D., Gustilo-Ashby T., Couchman G., Matchar D.B., McCrory D.C. Management of uterine leiomyomata: what do we really know? 1,2. Obstetrics & Gynecology. 2002; 100 (1): 8-17.

46. Hunter V.J., Weinberg J.B., Haney A.F., Soper J.T., Lavin P., Metsch L. et al. CA 125 in peritoneal fluid and serum from patients with benign gynecologic conditions and ovarian cancer. Gynecol Oncol. 1990; 36 (2): 161 -165.

47. DawoodM.Y., Khan-DawoodF.S. Plasma insulin-like growth factor-I, CA-125, estrogen, and progesterone in women with leiomyomas. Fertil Steril. 1994; 61 (4): 617-621.

48. Zhang T., Wu X., Ke C., Yin M., Li Z., Fan L. et al. Identification of potential biomarkers for ovarian cancer by urinary metabolomic profiling. J Proteome Res. 2013; 12 (1): 505-512. doi: 10.1021/pr3009572.

49. Slupsky C.M., SteedH., Wells T.H., Dabbs K., SchepanskyA., Capstick V. et al. Urine metabolite analysis offers potential early diagnosis of ovarian and breast cancers. Clin Cancer Res. 2010; 16 (23): 5835-5841. doi: 10.1158/1078-0432.CCR-10-1434.

50. Lee J.H., Kim Y.H., Kim K.-H., Cho J.Y., Woo S.M., Yoo B.C. et al. Profiling of Serum Metabolites Using MALDI-TOF and Triple-TOF Mass Spectrometry to Develop a Screen for Ovarian Cancer. Cancer research and treatment: official journal of Korean Cancer Association. 2017.

51. Fan L., Zhang W., Yin M., Zhang T., Wu X., Zhang H. et al. Identification of metabolic biomarkers to diagnose epithelial ovarian cancer using a UPLC/QTOF/MS platform. Acta Oncol. 2012; 51 (4): 473-479. doi: 10.3109/0284186X.2011.648338.

52. Солопова А. Г., Бицадзе В. О., Солопова А.Е., Макацария А.Д., Розанов И.А. Ра к яичника: современные подходы к классификации, диагностике, аудированию и дифференцированной тактике ведения больных. Журнал акушерства и женских болезней. 2017; 66 (2).

53. Turkoglu O., Zeb A., Graham S., Szyperski T., Szender J.B., Odunsi K. et al. Metab-olomics of biomarker discovery in ovarian cancer: a systematic review of the current literature. Metabolomics. 2016; 12 (4): 60. doi: 10.1007/s11306-016-0990-0.

54. Corrado G., Salutari V., Palluzzi E., Distefano M.G., Scambia G., Ferrandina G. Optimizing treatment in recurrent epithelial ovarian cancer. Expert Rev Anticancer Ther. 2017; 17 (12): 1147-1158. doi: 10.1080/14737140.2017.1398088.

55. Fan L., Yin M., Ke C., Ge T., Zhang G., Zhang W. et al. Use of Plasma Metabolo-mics to Identify Diagnostic Biomarkers for Early Stage Epithelial Ovarian Cancer. J Cancer. 2016; 7 (10): 1265-1272. doi: 10.7150/jca.15074.

56. Zhang H., Ge T., Cui X., Hou Y., Ke C., Yang M. et al. Prediction of advanced ovarian cancer recurrence by plasma metabolic profiling. Mol Biosyst. 2015; 11 (2): 516-521. doi: 10.1039/c4mb00407h.

57. Xie H., Hou Y., Cheng J., Openkova M.S., Xia B., Wang W. et al. Metabolic profiling and novel plasma biomarkers for predicting survival in epithelial ovarian cancer. Oncotarget. 2017; 8 (19): 32134-32146. doi: 10.18632/oncotar-get.16739.

58. Garcia E., Andrews C., Hua J., Kim H.L., Sukumaran D.K., Szyperski T. et al. Diagnosis of early stage ovarian cancer by 1H NMR metabonomics of serum explored by use of a microflow NMR probe. Journal of proteome research. 2011; 10 (4): 1765-1771.

59. Hilvo M., de Santiago I., Gopalacharyulu P., Schmitt W.D., Budczies J., Kuhberg M. et al. Accumulated Metabolites of Hydroxybutyric Acid Serve as Diagnostic and Prognostic Biomarkers of Ovarian High-Grade Serous Carcinomas. Cancer Res. 2016; 76 (4): 796-804. doi: 10.1158/0008-5472.CAN-15-2298.

60. Ke C., Hou Y., Zhang H., Fan L., Ge T., Guo B. et al. Large-scale profiling of metabolic dysregulation in ovarian cancer. Int J Cancer. 2015; 136 (3): 516-526. doi: 10.1002/ijc.29010.

61. ZhangZ. An In Vitro Diagnostic Multivariate Index Assay (IVDMIA) for Ovarian Cancer: Harvesting the Power of Multiple Biomarkers. Rev Obstet Gynecol. 2012; 5 (1): 35-41.

62. Yang H., Lau W.B., Lau B., Xuan Y., Zhou S., Zhao L. et al. A mass spectrometric insight into the origins of benign gynecological disorders. Mass Spectrom Rev. 2017; 36 (3): 450-470. doi: 10.1002/mas.21484.

63. Vouk K., Hevir N., Ribic-Pucelj M., Haarpaintner G., Scherb H., Osredkar J. et al. Discovery of phosphatidylcholines and sphingomyelins as biomarkers for ovarian endometriosis. Hum Reprod. 2012; 27 (10): 2955-2965. doi: 10.1093/humrep/des152.

64. Scutiero G., Iannone P., Bernardi G., Bonaccorsi G., Spadaro S., Volta C.A. et al. Oxidative Stress and Endometriosis: A Systematic Review of the Literature. Oxid Med Cell Longev. 2017; 2017: 7265238. doi: 10.1155/2017/7265238.

65. Meulem an C., Van denabeele B., Fieu ws S., Spiessens C., Timmerman D., D'Hooghe T. High prevalence of endometriosis in infertile women with normal ovulation and normospermic partners. Fertil Steril. 2009; 92 (1): 68-74. doi: 10.1016/j.fertnstert.2008.04.056.

66. MedicineP.C. otASfR. Endometriosis and infertility: a committee opinion. Fertility and sterility. 2012; 98 (3): 591 -598.

67. Pearce C.L., Templeman C., Rossing M.A., Lee A., Near A.M., Webb P.M. et al. Association between endometriosis and risk of histological subtypes of ovarian cancer: a pooled analysis of case-control studies. The lancet oncology. 2012; 13 (4): 385-394.

68. Somigliana E., Vercellini P., Vigano P., Benaglia L., Crosignani P.G., Fedele L Noninvasive diagnosis of endometriosis: the goal or own goal? Hum Reprod. 2010; 25 (8): 1863-1868. doi: 10.1093/humrep/deq141.

69. May K.E., Conduit-Hulbert S.A., Villar J., Kirtley S., Kennedy S.H., Becker C.M. Peripheral biomarkers of endometriosis: a systematic review. Hum Reprod Update. 2010; 16 (6): 651-74. doi: 10.1093/humupd/dmq009.

70. Letsiou S., Peterse D.P., Fassbender A., Hendriks M.M., van den Broek N.J., BergerR. et al. Endometriosis is associated with aberrant metabolite profiles in plasma. Fertility and Sterility. 2017; 107 (3): 699-706.

71. Mol B.W., Bayram N., Lijmer J.G., Wiegerinck M.A., Bongers M.Y., van der Veen F. et al. The performance of CA-125 measurement in the detection of endometriosis: a meta-analysis. Fertil Steril. 1998; 70 (6): 1101-1108.

72. Dutta M., Joshi M., Srivastava S., Lodh I., Chakravarty B., Chaudhury K. A meta-bonomics approach as a means for identification of potential biomarkers for early diagnosis of endometriosis. Molecular BioSystems. 2012; 8 (12): 32813287.

73. Vodolazkaia A., El-Aalamat Y., Popovic D., Mihalyi A., BossuytX., Kyama C.M. et al. Evaluation of a panel of 28 biomarkers for the non-invasive diagnosis of endometriosis. Hum Reprod. 2012; 27 (9): 2698-2711. doi: 10.1093/humrep/des234.

74. Ghazi N., Arjmand M., Akbari Z., Mellati A.O., Saheb-Kashaf H., Zamani Z. 1H NMR-based metabolomics approaches as non-invasive tools for diagnosis of endometriosis. International Journal of Reproductive BioMedicine. 2016; 14 (1): 1.

75. Jadoul P., Kitajima M., Donnez O., Squifflet J., Donnez J. Surgical treatment of ovarian endometriomas: state of the art? Fertil Steril. 2012; 98 (3): 556-563. doi: 10.1016/j.fertnstert.2012.06.023.

76. Kouremenos K.A., JohanssonM., MarriottP.J. Advances in gas chromatographic methods for the identification of biomarkers in cancer. J Cancer. 2012; 3: 404-20. doi: 10.7150/jca.4956.

77. Spratlin J.L., Serkova N.J., EckhardtS.G. Clinical applications of metabolomics in oncology: a review. Clin Cancer Res. 2009; 15 (2): 431-440. doi: 10.1158/1078-0432.CCR-08-1059.

78. Cuvillier O. Sphingosine in apoptosis signaling. Biochim Biophys Acta. 2002; 1585 (2-3): 153-162.

79. Sano M., Morishita T., Nozaki M., Yokoyama M., Watanabe Y., Nakano H. Elevation of the phospholipase A2 activity in peritoneal fluid cells from women with endometriosis. Fertil Steril. 1994; 61 (4): 657-662.

80. Vouk K., Ribic-Pucelj M., Adamski J., Rizner T.L. Altered levels of acylcarnitines, phosphatidylcholines, and sphingomyelins in peritoneal fluid from ovarian endometriosis patients. J Steroid Biochem Mol Biol. 2016; 159: 60-69. doi: 10.1016/j.jsbmb.2016.02.023.

81. Melo A.S., Rosa-e-Silva J.C., Rosa-e-Silva A.C., Poli-Neto O.B., Ferriani R.A., VieiraC.S. Unfavorable lipid profile in women with endometriosis. Fertil Steril. 2010; 93 (7): 2433-2436. doi: 10.1016/j.fertnstert.2009.08.043.

82. Marianna S., Alessia P., Susan C., Francesca C., Angela S., Francesca C. et al. Me-tabolomic profiling and biochemical evaluation of the follicular fluid of endometriosis patients. Mol Biosyst. 2017; 13 (6): 1213-1222. doi: 10.1039/c7mb00181a.


Для цитирования:


Говоров И.Е., Калинина Е.А., Ситкин С.И., Малушко А.В., Первунина Т.М., Шевелева Т.С., Иванов А.В., Комличенко Э.Э., Желонкина Э.Д., Комличенко Э.В. Метаболомика как инструмент поиска потенциальных биомаркеров гинекологических заболеваний. Акушерство и Гинекология Санкт-Петербурга. 2018;(2):30-39.

For citation:


Govorov I.E., Kalinina E.A., Sitkin S.I., Malushko A.V., Pervunina Т.M., Sheveleva Т.С., Ivanov A.V., Komlichenko Е.E., Zhelonkina E.D., Komlichenko E.V. Metabolomics as a tool for finding potential biomarkers of gynecological diseases. Obstetrics and Gynaecology of Saint-Petersburg. 2018;(2):30-39. (In Russ.)

Просмотров: 36


Creative Commons License
Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution 4.0 License.


ISSN 2541-8491 (Print)