Preview

Акушерство и Гинекология Санкт-Петербурга

Расширенный поиск

Клеточные механизмы формирования несостоятельности тазового дна

Полный текст:

Аннотация

Несостоятельность тазового дна(НТД) — периферическое смещение матки и/или стенок влагалища в результате растяжения фасциальных структур малого таза. Согласно мировым данным от 2,9 до 53 % женщин отмечают те или иные проявления пролапса гениталий, причём до 47 %, по данным разных авторов, это женщины трудоспособного возраста. В настоящее время доказана связь «омоложения» НТД, легкие формы которой встречаются с частотой до 6,7% у женщин в периоде менопаузального перехода, а у женщин репродуктивного возраста — 22,2–25%. НТД крайне негативно отражается на качестве жизни пациенток и их трудоспособности. 

Цель исследования: проанализировать патогенетические механизмы лежащих в основе НТД.

Материал и методы. Для формирования обзора предпринят анализ баз данных PubMed, EMBASE, MedLine, Cochrane и отобраны международные обзоры авторов, с наиболее крупными морфологическими и молекулярными исследованиями в той области.

Результаты. Ключевую роль в формировании НТД, помимо таких признанных факторов как беременность и роды, травма промежности, длительное повышение внутрибрюшного давления и возраст, имеют такие факторы как: биохимические особенности состава соединительной ткани, количество и качество в ней коллагена различных типов, эластина, и их соотношение, а так же действие на ее структуры различных биологически активных веществ, (MMP-2, TIMP-2 и TGF-β1) что, по мнению многих исследователей, регулируется генетически, а так же способность клеток соединительной ткани, в частности фибробластов, переносить окислительный стресс.

Заключение. При сравнении данных разных исследователей, зачастую контраверсионных, становится очевидным, что патогенез НТД требует проведения дальнейших исследований. Трансформирующий фактор роста (ТФР-1) стимулирует продукцию эластина и коллагена и ингибирует дегенерацию компонентов экстрацеллюлярного матрикса, и, он закономерно снижен у пациенток, страдающих НТД. По данным одних исследователей, количество эластина увеличивается в тканях у пациенток с НТД, другие же представляют контраверсионные результаты. На сегодня результатами экспериментальных работ доказано, что апоптоз клеток индуцируется механизмами окислительного стресса, а также влияет на метаболизм коллагена в фибробластах. 

 

Об авторах

М. Р. Оразов
Российский университет дружбы народов
Россия

Оразов Мекан Рахимбердыевич, доктор медицинских наук, профессор кафедры акушерства и гинекологии с курсом перинатологии

ул. Миклухо-Маклая, д.6, Москва, 117198



В. Е. Радзинский
Российский университет дружбы народов
Россия

Радзинский Виктор Евсеевич, доктор медицинских наук, профессор, член-корреспондент РАН, заслуженный деятель науки РФ, заведующий кафедрой акушерства и гинекологии с курсом перинатологии 

ул. Миклухо-Маклая, д.6, Москва, 117198



М. Б. Хамошина
Российский университет дружбы народов
Россия

Хамошина Марина Борисовна, доктор медицинских наук, профессор кафедры акушерства и гинекологии с курсом перинатологии 

ул. Миклухо-Маклая, д.6, Москва, 117198



Л. Р. Токтар
Российский университет дружбы народов
Россия

Токтар Лилия Равильевна, кандидат медицинских наук, доцент кафедры акушерства и гинекологии с курсом перинатологии 

ул. Миклухо-Маклая, д.6, Москва, 117198



Е. С. Силантьева
Клинический госпиталь «Лапино»
Россия

Силантьева Елена Сергеевна, доктор медицинских наук, заместитель главного врача по реабилитации 

1-ое Успенское шоссе, д. 111, Лапино, Одинцовский район, Московская область



Е. С. Кампос
Российский университет дружбы народов
Россия

Кампос Елена Сергеевна, аспирант кафедры акушерства и гинекологии с курсом перинатологии 

ул. Миклухо-Маклая, д.6, Москва, 117198



Список литературы

1. Руководство по амбулаторно-поликлинической помощи в акушерстве и гинекологии. Издательство «ГЭОТАР-Медиа»; 2016: 1023-1027.

2. Weber A.M., Brubaker L., Brown M.B. NICHD Pelvic Floor Disorders Network Investigators. Corrections to Report of a Trial of Burch Colposuspension. N Engl J Med. 2016; 374(23):2295. doi: 10.1056/NEJMc1605817.

3. DeLancey J.O., Swenson C.W., Morgan D.M., George J., Kearney R. Effect of Cystocele Repair on Cervix Location in Women With Uterus In Situ. Female Pelvic Med Reconstr Surg. 2017; 10:1097. doi: 10.1097/SPV.0000000000000438.

4. Lubowski D.Z., Patton V., Abraham E. Sacral nerve stimulation for faecal incontinence: medium-term follow-up from a single institution. ANZ J Surg. 2017; 87(6):462-466. doi: 10.1111/ans.13605.

5. Chung C.P., Cao S., Wakabayashi G., Han E.S. Management of pelvic floor disorder in a diethylstilbestrol daughter. Proc (Bayl Univ Med Cent). 2017; 30(3):291-292.

6. Meijerink A.M., van Rijssel R.H. Tissue composition of the vaginal wall in women with pelvic organ prolapse. Gynecol Obstet Invest. 2013; 75(1):21-27. doi: 10.1159/000341709.

7. Kim T., Sridharan I., Ma Y., Zhu B., Chi N., Kobak W. et al. Identifying distinct nanoscopic features of native collagen fibrils towards early diagnosis of pelvic organ prolapse. Nanomedicine. 2016; 12(3):667-675. doi: 10.1016/j.nano.2015.11.006.

8. Boreham M.K., Wai C.Y., Miller R.T., Schaffer J.I., Word R.A. Morphometric analysis of smooth muscle in the anterior vaginal wall of women with pelvic organ prolapse. Am J Obstet Gynecol 2002; 187(1):56–63.

9. Ruiz-Zapata A.M., Kerkhof M.H., Ghazanfari S., Zandieh-Doulabi B., Stoop R., Smit T.H., Helder M.N. Vaginal Fibroblastic Cells from Women with Pelvic Organ Prolapse Produce Matrices with Increased Stiffness and Collagen Content. Sci Rep. 2016; 6:22971. doi: 10.1038/srep22971.

10. Qi X.Y., Hong L., Guo F.Q., Fu Q., Chen L., Li B.S. Expression of transforming growth factorbeta 1 and connective tissue growth factor in women with pelvic organ prolapse. Saudi Med J 2011; 32(5):474–478.

11. Lin S.Y., Tee Y.T., Ng S.C., Chang H., Lin P., Chen G.D. Changes in the extracellular matrix in the anterior vagina of women with or without prolapse. Int Urogynecol J Pelvic Floor Dysfunct. 2007; 18(1):43–48. doi: 10.1007/s00192006-0090-1

12. Karam J.A., Vazquez D.V., Lin V.K., Zimmern P.E. Elastin expression and elastic fibre width in the anterior vaginal wall of postmenopausal women with and without prolapse. BJU Int. 2007;100(2):346–350. doi: 10.1111/j.1464410X.2007.06998.x.

13. Jackson S.R., Avery N.C., Tarlton J.F., Eckford S.D., Abrams P., Bailey A.J. Changes in metabolism of collagen in genitourinary prolapse. Lancet. 1996; 347(9016):1658–1661.

14. Connell K.A. Elastogenesis in the vaginal wall and pelvic-organ prolapse. N Engl J Med 2011; 364(24):2356–2358. doi: 10.1056/NEJMcibr1104976.

15. Kufaishi H., Alarab M., Drutz H., Lye S., Shynlova O. Static Mechanical Loading Influences the Expression of Extracellular Matrix and Cell Adhesion Proteins in Vaginal Cells Derived From Premenopausal Women With Severe Pelvic Organ Prolapse. Reprod Sci. 2016; 23(8):978-992. doi: 10.1177/1933719115625844.

16. Harman D. Aging: A theory based on free radical and radiation chemistry. J Gerontol. 1956; 11:298–300. doi: 10.1093/geronj/11.3.298

17. Liu C., Wang Y., Li B.S., Yang Q., Tang J.M., Min J., Hong S.S. Role of transforming growth factor β 1 in the pathogenesis of pelvic organ prolapse: A potential therapeutic target. Int J Mol Med. 2017; 40(2):347-356. doi: 10.3892/ijmm.2017.3042.

18. Pimentel D.R., Amin J.K., Xiao L., Miller T., Viereck J., Oliver-Krasinski J., et al. Reactive oxygen species mediate amplitude-dependent hypertrophic and apoptotic responses to mechanical stretch in cardiac myocytes. Circ Res. 2011; 89(5):453–460.

19. Kroese L.J., Scheffer P.G. 8-hydroxy-2′-deoxyguanosine and cardiovascular disease: A systematic review. Curr Atheroscler Rep. 2014; 16:452. doi: 10.1007/s11883-014-0452-y.

20. Gordon K.J., Blobe G.C. Role of transforming growth factor-beta superfamily signaling pathways in human disease. Biochim Biophys Acta. 2008;1782(4):197– 228. doi: 10.1016/j.bbadis.2008.01.006.

21. Moalli P.A., Klingensmith W.L., Meyn L.A., Zyczynski H.M. Regulation of matrix metalloproteinase expression by estrogen in fibroblasts that are derived from the pelvic floor. Am J Obstet Gynecol. 2002; 187(1):72–79

22. Swenson C.W., Simmen A.M., Berger M.B., Morgan D.M., DeLancey J.O. The long and short of it: anterior vaginal wall length before and after anterior repair. Int Urogynecol J. 2015; 26(7):1035-1039. doi: 10.1007/s00192-015-2636-6.

23. Berger M.B., Morgan D.M., DeLancey J.O. Levator ani defect scores and pelvic organ prolapse: is there a threshold effect? Int Urogynecol J. 2014; 25(10):13751379. doi: 10.1007/s00192-014-2388-8.

24. DeLancey J.O., Morgan D.M., Fenner D.E., Kearney R., Guire K., Miller J.M., et al. Comparison of levator ani muscle defects and function in women with and without pelvic organ prolapse. Obstet Gynecol. 2017; 109 (2 Pt 1):295–302. doi: 10.1097/01.AOG.0000250901.57095.ba

25. Swenson C.W., Kolenic G.E., Trowbridge E.R., Berger M.B., Lewicky-Gaupp C., Margulies R.U., et al. Obesity and stress urinary incontinence in women: compromised continence mechanism or excess bladder pressure during cough? Int Urogynecol J. 2017. doi: 10.1007/s00192-017-3279-6


Для цитирования:


Оразов М.Р., Радзинский В.Е., Хамошина М.Б., Токтар Л.Р., Силантьева Е.С., Кампос Е.С. Клеточные механизмы формирования несостоятельности тазового дна. Акушерство и Гинекология Санкт-Петербурга. 2017;(3):66-72.

For citation:


Orazov M.R., Radzinsky V.E., Khamoshina M.B., Toktar I.R., Silantyeva E.S., Campos E.S. Cellular mechanisms of insolvency of the pelvic floor. Obstetrics and Gynaecology of Saint-Petersburg. 2017;(3):66-72. (In Russ.)

Просмотров: 32


Creative Commons License
Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution 4.0 License.


ISSN 2541-8491 (Print)